回收效率
50 bp 回收效率：30-50%
100-200 bp 回收效率：50-70%
200-5000 bp 回收效率：70-90%
5 kb-10 kb 回收效率：50-70%

产品组份
膜结合液（MB）：25ml (50T)
膜漂洗液（MW）：15ml (50T) 初次使用前请按瓶标说明加入无水乙醇混匀
洗脱缓冲液（EB）：10ml (50T)
平衡液（BL）：25ml (50T) 请使用当天平衡液处理过的吸附柱
离心吸附柱及收集管：50(50T) 室温密闭干燥保存

实验准备
用户需自行准备的材料：含 DNA 样品的琼脂糖凝胶，无水乙醇，异丙醇， 55ºC 水浴，切胶设备，台式离心机。
初次使用本试剂盒，请按瓶标说明向膜漂洗液（MW）中加入相应体积的无水乙醇（用户自备），并在试剂瓶上做标记。

操作步骤
1. 柱平衡：向吸附柱中（吸附柱放入收集管中）加入 400 μl 的平衡液 BL，12,000 rpm (-13,400×g ) 离心 1 min，弃收集管中滤液，将吸附柱重新放回收集管中。（请使用当天处理过的柱子，这一步很重要，试剂盒放置时间长不用，处理一下效果如新，减少浪费。如果新开封马上用，可以不做柱平衡）
2. 切胶：用干净刀片将目的 DNA 条带切下，尽量切除不含 DNA 的凝胶。注意：紫外线对 DNA 片段有损坏作用，切胶要迅速，避免长时间照射，同时做好眼睛及皮肤的防护。
3. 称重：将切下的含有目的 DNA 条带的凝胶切成小块，放入已称重的 1.5 ml 塑料离心管中，再称重（总重-空重=净重）。
4. 溶胶：加入等体积膜结合液（MB），60℃水浴，每隔 2-3 min 上下振荡，直到凝胶完全溶解。注意：如凝胶重量为 100 mg，其体积可视为 100 ul，则加入 100 ul 膜结合液；如凝胶浓度大于 2%，所用膜结合液体积加倍；对于 回收<300 bp 的小片段或者大于 3000bp 的大片段，可在凝胶完全溶解后再加入 1> 5. 吸附：待溶液冷却后加入离心吸附柱中，室温静置 2 min，让 DNA 片段与吸附柱中的硅胶膜充分结合，然后 12,000 rpm 离心 1 min，弃收集管中滤液。注意：如总体积超过 750 ul 可分 2 次将溶液加入同一离心吸附柱中；为增加目的 DNA 片段的洗脱浓度，也可将多管溶胶液加入到同一离心吸附柱中。
6. 清洗：加入 600 ul 的膜漂洗液（MW），12,000 rpm 离心 1 min，弃收集管中废液。注意：膜漂洗液（MW）按要求加入乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防酒精挥发; 如后续实验要求纯度较高，可再清洗一次。
7. 干燥：将离心吸附柱于 12,000 rpm 离心 2 min，甩干残留漂洗液。注意：此步不能省略，否则残留乙醇会影响后续实验。
8. 洗脱：将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 塑料离心管中，在吸附柱中央加入 30-50 ul 洗脱缓冲液（EB），室温放置 2 min。12,000 rpm 离心 1 min 收集 DNA 片段。注意：为增加回收效率，可将洗脱液在 60℃预热，也可将得到的溶液重新加入到离心管中，室温放置 2 min，再次离心收集。如需使 用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0-8.5 之间）。