淋巴细胞分离液

淋巴细胞分离液

产品编号 包装 价格
130010-L 60ml 86.00
130010-L1 120ml 125.00
130010-L2 200ml 190.00

产品简介  
    淋巴细胞分离液是一种根据细胞密度差异,借助离心产生的重力加速度,进行细胞的分离纯化的常用试剂。从外周血、骨髓、外周淋巴器官或各种组织分离出来的细胞是多种细胞的混合物,如要研究某种特定细胞的结构、功能或表面标志等特征,首先要分离纯化细胞。根据细胞的大小、密度、表面荷电、吸附能力或表面抗原的差异可实现对目的细胞的分离、纯化,常用的细胞分离与纯化方法有密度梯度沉降法、细胞电泳、贴附、亲和层析、花环形成、补体介导杀伤溶解以及流式细胞仪(FCM)和免疫磁珠分选等。密度梯度沉降法是根据细胞密度差异,借助细胞分离液和离心,进行细胞分离纯化的常用方法之一。细胞分离液则是一类能产生一定程度的密度梯度,高密度时粘度不高,浓度不同时渗透压变化不大,经洗涤去除后能用于体外培养,而对细胞没有毒性。zui常用的细胞分离液有Ficoll和Percoll。Ficoll是蔗糖的多聚体,呈中性,吸水性强,平均分子量为400,000,当密度为1.2g/ml仍未超出正常生理性渗透压,也不穿过生物膜。红细胞、粒细胞比重大,离心后沉于管底;淋巴细胞和单核细胞的比重小于或等于分层液比重,离心后漂浮于分层液的液面上,也可有少部分细胞悬浮在分层液中。吸取分层液液面的细胞,就可从外周血中分离到单个核细胞。  
    赛驰生物生产的淋巴细胞分离液(Lymphocytes Separation Medium)以Ficoll和泛影酸钠为主原材料,配制成密度为1.077的,无菌溶液。该产品适用于人淋巴细胞和大多数哺乳动物细胞的分离纯化,能除去红细胞和死细胞碎片。
包装清单  
    2-8℃避光保存。
使用说明

    1.在离心管中加入适量。
  2.取抗凝血(无溶血)与等量Hank’s液或平衡盐溶液充分混匀,用滴管沿管壁缓慢叠加于分层液面上,注意保持两液面界面清晰,水平离心2000rpm×20分钟。
  3.离心后,管内液体分为三层,上层为血浆和Hank’s液,下层主要为红细胞和粒细胞。中层为,在中上层液面处有一白色云雾层狭窄带,即为富含淋巴细胞和单核细胞的单个核细胞(PBMC)及血小板。
    4.吸去zui上层的血浆,收集血浆层和交界面的单个核细胞,尽量全部吸出PBMC,移入一新的离心管中;
    5.加入Hanks’液或无血清培养液,混匀后离心200×g 10分钟,弃去上清液(低速离心有利于去除细胞悬液中留存的血小板)。
    6.再用同样洗涤液洗涤细胞2次,每次离心500×g 10分钟,以洗去残留的。再用细胞培养液将细胞调配成适当浓度。通常,每毫升外周血可得1~2×106PBMC

产品编号
130010-L
130010-L1
130010-L2
60ml
120ml
200ml
说明书
1 份
保存条件

淋巴细胞分离液1.077(通用型)

淋巴细胞分离液1.077(通用型)

¥200.00

货号:BL672A

规格:100ml

品牌:Jinpan

产品简介

本产品是一种用于分离淋巴细胞的无菌、低内毒素水平的密度梯度分离液。人血中红细胞和粒细胞密度较大,为1.090 g/mL左右,淋巴细胞和单核细胞密度为1.075~1.090 g/mL,血小板为1.030~1.035 g/mL。为此利用一种密度介于1.0751.092之间而近于等渗的溶液做密度梯度离心,使一定密度的细胞按相应密度梯度分布,从而将各种血细胞加以分离。

 

操作方法(常规方法,仅供参考):

124体积生理盐水、PBSHank’s等无菌稀释液稀释血液样品。

2、在离心管中加入15-20mL分离液,小心将稀释后的血样20-30mL平铺到分离液液面上方。

3室温离心400 g1530 min

4、离心结束后,此时离心管中由上至下细胞分四层:第一层为血浆层,第二层为环状乳白色淋巴细胞(目的细胞),第三层为透明分离液层,第四层为红细胞层。

5、小心吸取第二层细胞到另一离心管中,加入三倍体积的生理盐水、PBSHank’s等无菌稀释液混匀,300g,离心 10min,弃上清。

6、为了去除残余血小板,可将细胞重悬于30-50mL生理盐水、PBSHanks液等无菌稀释液中,室温200g离心10-15分钟,小心弃掉上清。

7、可选择性地重复第6步,将会去除绝大部分血小板。

8、用适当体积的后续实验所需相应液体重悬目的细胞,进行后续实验。

 

注意事项

1、在实验过程中样本、试剂及实验环境均应在22±2℃的条件下进行。为获得最佳的实验结果,最好在取血2h 内进行实验,血液存放时间越长,细胞分离效果越差。血液放置超过6h后分离效果更差甚至不能达到分离目的。

2、本实验最好不要使用高聚合材质(如聚苯乙烯)的塑料制品,应使用无静电、低静电离心管及未经碱处理过后的玻璃制品,因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会变成毛面,影响细胞分离效果。

3、吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒细胞数量增加;吸取过多的淋巴细胞层上层溶液会导致血浆蛋白及血小板混杂。

4、 因血液样本的个体差异及血液粘度不同,使用本试剂得到的分离效果也会有一定差异,可根据实际情况调整离心力及离心时间,离心力最大不超过1000g

  

保存条件:

常温保存,两年有效;拆封后请置于4℃避光保存,一个月内使用。

货号 BL672A
规格 100ml
品牌 Jinpan
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  • 淋巴细胞分离液1.077(通用型)
  • 淋巴细胞分离液1.077(通用型)

淋巴细胞分离液

淋巴细胞分离液

¥200.00

货号:BL590

规格:200ml

品牌:Jinpan

淋巴细胞分离液


产品简介:

人血中红细胞和白细胞等细胞密度较大,为1.090g/ml左右,淋巴细胞和单核细胞密度为1.075~1.090g/ml,血小板为1.030~1.035g/ml,本产品为密度在 1.077 g/mL 并且与外周全血等渗的溶液(分离液),经过密度梯度离心,使一定密度的细胞按照相应密度梯度分布,从各种血细胞中分离出淋巴细胞。

本产品收集细胞的得率大于80%

使用方法:

常规实验操作方法:

1、取新鲜抗凝血2ml,用等体积PBSHank’s液混匀。

2、在离心管中加入3ml分离液,小心将稀释后的血样平铺到分离液液面上方。

3、离心 400 g,30-40 min

4、离心结束后,此时离心管中由上至下细胞分四层:第一层为血浆层,第二层为环状乳白色淋巴细胞,第三层为透明分离液层,第四层为红细胞层。

5、小心吸取第二层细胞到另一离心管中,加入三倍体积的PBSHank’s液混匀,60-100g,离心 10min,弃上清。以0.5ml后续实验所需相应液体重悬目的细胞。

注:血液样品量增大时,可通过改变离心管直径的方法始终保持样本量高度与分离液高度为24cm 3cm,其他分离条件不变。

        

为满足客户实际使用需求,不同血液样本量推荐具体实验操作方法详见说明书。


注意事项:

1、全过程样本、试剂及实验环境均需在20±2℃的条件下进行。为获得最佳的实验结果,最好在取血2h 内进行实验,血液存放时间越长,细胞分离效果越差。血液放置超过6h后分离效果更差甚至不能达到分离目的。

2、本实验最好不要使用高聚合材质(如聚苯乙烯)的塑料制品,应使用无静电、低静电离心管及未经碱处理过后的玻璃制品,因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会变成毛面,影响细胞分离效果。

3、吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒细胞数量增加。

4、吸取过多的淋巴细胞层上层溶液会导致血浆蛋白及血小板混杂。

5、当血液样本粘度过高需稀释时,最优稀释方法:将血液与PBS Hank’s液混匀备用。注:不当的稀释方法会降低细胞得率及活性。如血液样本经过稀释则分离过程中需适当降低离心力和离心时间。

7 因血液样本的个体差异及血液粘度不同,需调整离心力及离心时间,离心力最大不超过1000g

 

保存条件

常温保存,有效期年。本品易感染细菌,需无菌条件操作。无菌条件下操作,启封后置常温保存。如4℃保存,本分离液易出现白色结晶,影响分离效果。

货号 BL590
规格 200ml
品牌 Jinpan
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MPBIO淋巴细胞分离液 安倍医疗


MPBIO淋巴细胞分离液 安倍医疗

简要描述:* 用途:
用于体外分离外周淋巴血细胞,也可以从其他来源中分离单核细胞,包括脐带血细胞和骨髓细胞。

详细介绍

产品咨询

* 用途:
用于体外分离外周淋巴血细胞,也可以从其他来源中分离单核细胞,包括脐带血细胞和骨髓细胞。

* 方法概述:
分离混合血液白细胞早期的方法,总是伴随红细胞聚集,只轻微影响白细胞。通过离心,红细胞密度增加聚集,同时可以从离心管上部收集白细胞。
Böyum提出了一种更方便,通过使用Ficoll® 甲泛影钠溶液离心快速分离方法。稀释的血液在Ficoll?甲泛影钠溶液中分层,低速短时离心。红细胞和沉降到管底的粒细胞,和单个核细胞(淋巴细胞)和血小板可以从两个分层之间收集。
许多研究者不断努力,修订了Böyum方法,MP生物医学公司生产的LSM,方法的*之处是运用,泛影钠成功的代替了甲泛影钠。

* 程序原理:
除去血液中的纤维蛋白或肝素处理血液以1:1的比例用生理盐水或平衡盐溶液稀释,在分离溶液中分层,低速离心30分钟。通过离心,迁移能力不同zui终形成不同的细胞层。
大部分的红细胞和粒细胞通过梯度迁移形成颗粒状。由于其密度不同,淋巴细胞和其他单个核细胞(单核细胞和血小板)分布在在血浆和LSM两层中间。淋巴细胞可以通过回抽分层回收,在进一步去除血小板,LSM和血浆。

* 试剂:
LSM® 是一种灭菌过滤溶液。密度是1.0770-1.0800克/毫升20℃。

50494 LYMPHOCYTE SEPARATION MEDIUM – LSM® 5×100 ml 1493.80
50494X LYMPHOCYTE SEPARATION MEDIUM – LSM® 100 ml 385.00

 

淋巴细胞分离简述

作为一种重要的免疫细胞,淋巴细胞的数目及功能状态反应了机体所处的免疫状态,与一些先天或后天的免疫缺陷性疾病、传染性疾病以及恶性肿瘤等免疫功能障碍有关的疾病有密切关联。因此,研究淋巴细胞的免疫状态对多种疾病的诊断、预防及治疗都有着极为重要的意义。而淋巴细胞分离是研究淋巴细胞功能状态及其在细胞免疫中作用的关键步骤。

淋巴细胞分离来源主要是外周血(或淋巴组织细胞悬液),目前常规的淋巴细胞分离方法有基于淋巴细胞分离液的密度梯度离心法、HES沉降法、以及基于抗原抗体结合的磁珠与流式细胞分离法。本文就现在常用的几种淋巴细胞分离方法及其特点做一简要综述。

1、密度梯度离心法

该方法采用淋巴细胞分离液进行进行密度梯度离心分离得到淋巴细胞。外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)包括淋巴细胞和单核细胞,其体积、形状和比重与其他细胞不同从而导致各种细胞具有不同的密度,淋巴细胞分离液即是一种根据细胞密度差异,借助离心产生的重力加速度,使一定密度的细胞按相应密度梯度分布,从而将各种血细胞加以分离纯化的常用试剂。常用的淋巴细胞分离液有Ficoll淋巴细胞分离液和Percoll淋巴细胞分离液。

1.1. Ficoll-Hypaque密度梯度离心法

Ficoll是一种中性的蔗糖的多聚体,吸水性强,平均分子量为400,000,具有高密度、低渗透压、无毒性的特点。单一的Ficoll溶液分子量大,高浓度时增加粘度易导致细胞聚集,因此常用的Ficoll淋巴细胞分离液采用了降低Ficoll浓度,同时加入泛影葡胺增加密度的Ficoll-Hypaqu混合溶液,其密度在1.077左右,近于等渗,适用于分离外周血淋巴细胞和单个核细胞(PBMC,外周血淋巴细胞和单个核细胞比重为1.075左右)1。利用该分离液作密度梯度离心时,各种血液成分将按密度梯度重新分布聚集,红细胞与粒细胞由于密度较大故沉于分层液的底部,淋巴细胞和单核细胞(PBMC)的比重与分层液比重相近,故位于分层液界面上。23

 Ficool淋巴细胞分离液是一种经典的淋巴细胞分离试剂,分离得到的PBMC纯度在90%以上,收获率可达8090%,活细胞百分率在95%以上。然而因其固定的密度,故只适用于PBMC、脊髓干细胞、骨髓干细胞的分离。

订货信息:

供应商               品名                    货号        规格

MP Biomedicals   Lymphocyte Separation Medium – LSM?  0850494X    100 mL  

biomarket       LymphoprepTM分离液          1114544      250ml

 

1.2. Percoll密度梯度离心法:

Percoll成分为硅化聚乙烯吡咯烷酮(PVP)的颗粒,渗透压很低,粘度也很小,不穿透生物膜,对细胞无毒害无刺激,不引起细胞聚集,可形成高达1.3gml密度。特别的是percoll的颗粒直径大小不同,可在离心过程中自然形成连续的密度梯度,从而将不同密度的细胞分离出来。而且Percoll扩散常数低,所形成的梯度十分稳定,配置不同浓度(密度)时仅需通过用PBS(1x)或组织培养液稀释即可获得,广泛用于分离细胞、亚细胞成分、细菌及病毒,还可将受损细胞及其碎片与完好的活细胞分离。采用Percoll细胞分离液得到的细胞可直接用于基于荧光标记的细胞分选。4

因此,Percoll细胞分离液不仅适用于外周血中PBMC的分离(单个核细胞和淋巴细胞分别处于不同的密度层),而且能将全血中的多种细胞分离出来(各种细胞处于相应的梯度层),还可根据不同实验室需要配置所需的连续密度梯度,分离特定的细胞或亚细胞组分。初步分离得到的PBMC可根据需要不同密度梯度的不连续梯度离心方法进行进一步细胞纯化,如纯化淋巴母细胞和除去死细胞以及富含NK活性大颗粒淋巴细胞(LGL)的纯化。5

常用percoll浓度密度换算(Percoll原液与10倍浓缩的PBS91的比例混合,此时溶液 为100 Percoll,比重是1.127

Percoll浓度()    70       60       50       40       30        20

比重gml       1.090  1.077    1.067   1.056   1.043     1.031

订货信息:

供应商    货号           规格

GE    17-0891-01         1 L

GE    17-0891-01         100 ml

 

1.3. Iodixanol梯度离心法

Iodixanol是一种化学成分为碘海醇(Iohexo1)的白色、高亲水性粉剂,可以配成型的非离子密度梯度分离液。分子量为821,密度为2.1 g/ml,是非离子型的、对细胞无毒性的化合物,可用于细胞、细胞器、生物大分子、病毒等各种生物物质的分离或提纯6。该分离液的密度可以通过测定其折射率来确定,配置后可以进行高温高压的灭菌。可根据需要配置成不同密度的梯度离心液,主要用于脂蛋白的分离,也可用于淋巴细胞分离纯化。7,8

 

订货信息:

供应商              品名                        货号           规格

Axis-Shield      Nycodenz(粉剂)         AS1002424      1x500g

Axis-Shield  LymphoprepTM  分离管(即用型)   AS1019818    18Tubes x10ml

Axis-Shield   OptiPrepTM  分离液(即用型)AS1114542      1x250ml

Axis-Shield  LymphoprepTM  分离液(即用型)AS1114544    1x250ml

Axis-Shield  LymphoprepTM  分离液(即用型)AS1114545    4x250ml

Axis-Shield  LymphoprepTM  分离液(即用型)AS1114547    1x500ml

Axis-Shield  LymphoprepTM  分离液(即用型)AS1114547     6x500ml

Axis-Shield  NycoPrepTM 1.077  分离液(即用型)AS1114550  4x250ml

Axis-Shield  NycoPrepTM 1.077  分离液(即用型)AS1114551   1x250ml

 

2、淀粉(HES)离心沉淀法

HES是一种由高分子量支链淀粉经降解进一步加工处理后制成的血浆代用品9。自然状态下,HES与红细胞膜上的负电荷结合,使红细胞彼此以凹面相贴聚集而下沉,与血浆及单个核细胞形成清晰的界面。如果HES与外周血混合物经低速离心可加快红细胞的下沉,便于吸取含单核细胞层,使PBMC的分离过程简单化。该方法分离PBMC操作简便,成本低廉,分离细胞数量与密度梯度离心方法相当。然而该方法分离的细胞质量有待进一步提高。10-12

订货信息:

国内多家血浆代用品供应商如湖北武汉康宝泰精细化工有限公司可以获得。

 

3、基于免疫技术的淋巴细胞分离法

目前多家生物制品公司均开发出的基于抗原抗体特异性结合的淋巴细胞分离试剂盒,主要有免疫磁珠分离法、流式细胞分选法13,14。这些试剂盒能特异性分离外周血或其它组织中的单一淋巴细胞类型,操作简便,所得细胞纯度高,可直接用于下游分子生物学实验。然而该法基于抗体技术,因此成本高,还未成为目前的主流淋巴细胞分离方法。

订货信息

供应商              品名                              货号

Stem cell   EasySep? Magnet全淋巴细胞富集试剂盒    19961HLA

Stem cell   EasySep? MagnetT细胞富集试剂盒         19951HLA

Stem cell   EasySep? MagnetB细胞富集试剂盒         19954HLA

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主要参考文献:

1. Separation of human lymphocytes from citrated blood by density gradient (NycoPrep) centrifugation: monocyte depletion depending upon activation of membrane potassium channels. B?yum A, Brincker Fjerdingstad H, Martinsen I, Lea T, L?vhaug D. Scand J Immunol. 2002 Jul;56(1):76-84.

2. Separation of leucocytes: improved cell purity by fine adjustments of gradient medium density and osmolality. B?yum A, L?vhaug D, Tresland L, Nordlie EM. Scand J Immunol. 1991 Dec;34(6):697-712.

3. Isolation of lymphocytes, granulocytes and macrophages. B?yum A.

Scand J Immunol. 1976 Jun;Suppl 5:9-15.

4. A simple method for human peripheral blood monocyte isolation. de Almeida MC, Silva AC, Barral A, Barral Netto M. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000 Mar-Apr;95(2):221-3

5. Isolation of brain and spinal cord mononuclear cells using percoll gradients.

Pino PA, Cardona AE. J Vis Exp. 2011 Feb 2;(48). pii: 2348.

Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000 Mar-Apr;95(2):221-3.

6. Iodixanol梯度离心法分离脂蛋白. 党美林,林元喜. 《第七届海峡两岸心血管科学研讨会论文集》.2009

7. Su-Ting Chen, Jia-Yun Li, Yi Zhang. Recombinant MPT83 Derived from Mycobacterium tuberculosis Induces Cytokine Production and Upregulates  the Function of Mouse Macrophages through TLR2. The Journal of Immunology, 2012, 188: 668–677

8.Xingui Tian, Xiaobo Su, Xiao Li. Protection against Enterovirus 71 with Neutralizing Epitope Incorporation within Adenovirus Type 3 Hexon. PLoS ONE. July 2012,Volume 7, Issue 7 , e41381.

9.Forster H.Physical and chemical properties of hydroxyethylstarch.Plasˉma Volume Expansion,1992,105-121.

10.Rubinstein P,Dobrila L,Rosenfield RE,et al.Processing and cryopˉreservation of placental/umbilical cord blood for unrelated bone marrow reconstitution.Proc Natl Acad Sci,1995,92:10119-10122.

11.Denning-kendall P,Donaldson C,Nicol A,et al.Optimal processing of human
umbilical cord blood for clinical banking.Exp Hematol,1996,24:1394-1401.

12. 对外周血单个核细胞分离方法探讨. 韩亚萍 刘源 章莉莉 刘婷 李军 黄祖瑚 .中华现代临床医学杂志 2003年11月.1(9)

13.181-P: A rapid method to enrich specific lymphocyte populations (T cells, B cells, total lymphocytes) from whole blood. Karina L. McQueen, Jenna L. Warren, Allen C. Eaves, Terry E. Thomas.Human Immunology. Volume 68(1), Supplement: S106. 33rd Annual ASHI Meeting Abstracts October 2007

14. Collection, Storage, and Preparation of Human Blood Cells. Dagur PK, McCoy JP Jr. Curr Protoc Cytom. 2015 Jul 1;73:5.1.1-5.1.16